细胞凋亡的定性检测依赖于形态学观察及DNA电泳,其定量检测则需借助于流式细胞检查。使用碘化丙啶(PI)染色检测DNA含量是最早出现的凋亡定量检测方法［1］。进入90年代,检测DNA断裂点的TUNEL(Terminal deoxylnucleotidyl transferase mediated-dUTP nick end labeling)技术成为凋亡定量检测的主流。1995年Vermes 首次使用荧光素标记的膜联蛋白V(FITC- Annexin V)联合PI染色双参数技术定量检测凋亡，目前国内尚未见报道［2］。我们同时使用上述3种方法对地塞米松处理的小鼠胸腺细胞进行凋亡检测对比研究，借以探讨这一新的方法的应用价值，现报道如下。
1 材料与方法
1.1 材料 4周龄雄性昆明小鼠12只。PI(Sigma)。TUNEL试剂盒(德国Boehringer Mannheim)。Annexin V/PI试剂盒(法国国际免疫公司)。流式细胞仪(FACScan型 美国BD公司)。
1.2 方法
1.2.1 动物模型及细胞制备 10只小鼠腹腔注射地塞米松25 mg/kg，2只小鼠腹腔注射生理盐水作为对照。10 h后取胸腺，网搓法分离胸腺细胞。PBS洗2遍后调细胞浓度2×106 ml-1，备用。
1.2.2 PI染色法 取2×106 细胞,加入80%冷乙醇，4℃ 30 min，PBS洗1次，加入PI 50 mg/ml，0.1%TritonX-100，0.1 mmol/L EDTA(Na)2 ，RNase 50 μg/ml。置黑暗处1 h后检测。
1.2.3 TUNEL法 取2×106 细胞，1%多聚甲醛冰上固定15 min,离心去上清,70%冷乙醇固定24 h。然后按试剂盒说明操作。
1.2.4 Annexin V/PI法 取490 μl细胞加入5 μl FITC-Annexin V及5 μl PI(浓度250 μg/ml)，混匀置冰浴暗处温育10 min，PBS洗2遍，上机分析。
1.2.5 流式细胞仪分析 光源为488 nm氩离子激光器，FITC受激发后发绿色荧光，PI发红色荧光,每份标本收集10 000个细胞,然后在Macintosh650计算机上用相关软件分析数据,用HP-Deskjet 1600CM打印机打印结果。
