4、固定和破膜
① 加固定剂,室温暗处孵育15分钟,离心500g 5分钟,弃上清;
② 加破膜剂温暗处孵育10分钟。(剂量参照说明书)
③ 加23mLPBS洗液,离心500g 5分钟,弃上清。
5、细胞内染色
① 加入荧光标记的细胞因子抗体,混匀,室温暗处孵育30分钟。
② 加23mL洗液,离心500g 5分钟,弃上清,加入500LPBS上机或加入500L 1% PFA固定后再上机
七、注意事项
1. 标本处理:避免使用络合钙的抗凝剂,如ACD与EDTA,因为它们会限制钙依赖性激活过程,推荐用肝素钠。此外LPS,一种常见的生物试剂污染物,是强细胞激活剂,可能会混淆试验结果。血样在8小时内分析,超过8小时会导致活性的损失,一般细胞因子阳性细胞会减少5%。如不能在8小时之内检测,应将真空采血管水平室温放置。
2.刺激激活:检测不同的细胞因子根据情况选择不同的刺激剂组合和刺激时间,以保证最佳的检测效果。比如,要检测IFN-γ则可选择PMA和Ionomycin同时刺激;如果用CD4做表面标记,由于多数病人的CD4抗原会因PMA的激活而有不同程度的下调,所以培养时间不能太长,4-6小时为宜,否则CD4下调影响分析
3.选择合适的对照:为保证结合的真是和可靠性,至少荧光设置以下对照:
①未刺激对照:激活时由于BFA的存在抑制了胞内蛋白的转运,因此在激活过程中产生 的抗原与细胞因子会滞留胞内,未刺激对照也应包含BFA。
② 激活对照:激活对照使用细胞表面表达CD69来评价激活与否,如果未达到CD69期望的水平,则激活步骤出了问题,某一试剂可能失活,过期,制备不当或溶剂污染,需制备新鲜刺激剂重新实验。
③同型对照:使用与荧光标记抗体相同来源、相同标记、相同剂量和亚型的免疫球蛋白,用于消除由于抗体非特异性结合到细胞表面而产生的背景染色。
4. Fc受体阻断:使用试剂阻断Fc受体可以有效减少非特异荧光染色,在小鼠可以用纯化的抗小鼠的CD16/32(eBioscience, 目录号14-0161-81),在大鼠可以用纯化的抗大鼠的CD32,在人可以用过量的同种无关纯化Ig或血清。
5. 荧光素的选择:检测相对低表达细胞因子如IL-4时,应选用PE或APC标记;单检测某一细胞因子时最好也选用PE或APC标记;同时检测多种细胞因子时,弱表达的应选用PE或APC,FITC标记最好用于高表达细胞因子如IFN-γ
八、问题与解答
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问题 |
原因 |
解决 |
注释 |
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无CD69胞内染色 |
细胞未激活 |
激活剂制备不当,见激活剂制备储存一节。 |
PMA+Ionomycin激活4小时后CD3+T淋巴细胞CD69阳性率应>90% |
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使用了错误的抗凝剂 |
应使用肝素钠,不要使用肝素锂,避免使用ACD与EDTA等络合钙的抗凝剂。 |
淋巴细胞激活需要Ca,络合Ca的抗凝剂会影响激活。 | |
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细胞未通透 |
在使用通透液前先使用溶血素 |
溶血素辅助细胞通透 | |
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BFA失活或制备不当 |
详见BFA制备BFA于-20℃储存 |
详见BFA制备 | |
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胞内染色阳性但很弱 |
抗细胞因子抗体浓度不对 |
按R&D推荐量使用荧光抗体 |
正常的激活T淋巴细胞IL-4表达通常<2%,应使用PE或APC标记 |
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通透后细胞在胞内染色前未洗 |
按操作程序通透后洗细胞再胞内染色 |
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背景染色太高 |
荧光单抗不纯或荧光与抗体结合不牢导致解析出的荧光染料非特异结合 |
使用R&D 试剂 |
使用试剂阻断Fc受体可以有效减少非特异荧光染色,详见Fc段受体阻断节 |
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抗体与固定后的胞内抗原亲和力低,需提高抗体浓度。 |
使用R&D试剂并按推荐剂量 |
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错误的同型对照,对照Ig浓度过高 |
按R&D推荐量使用R&D匹配的同型对照试剂 |
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严重的细胞损失 |
洗涤离心步骤丢失细胞 |
固定通透的细胞离心500g |
固定后细胞密度低于活细胞,需用高转速离心。 |
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加样步骤丢失细胞 |
弃上清带走细胞 |
小心吸样 | |
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溶血不完全 |
PMA+Ionomycin激活 |
按操作步骤用FL3做阈值去除碎片和未溶细胞 |
PMA可稳定红细胞膜,PMA+I激活全血较难溶 |
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溶血未在室温进行 |
在室温进行溶血 |
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