二、培养细胞常用的染色方法
1、细胞固定的基本方法
固定组织、细胞的目的：
把组织和细胞的原有结构尽可能完整地保存下来，避免组织和细胞发生降解、自溶、腐败和变形等；同时，固定还可以使细胞的各部分易于着色，适于观察、长期保存和分析。
固定组织、细胞的原则：
尽可能选用新鲜培养物；根据检测工具、对象、目的和要求选择固定剂和固定方法。
固定前的准备：
各种细胞培养物，如双盖片悬滴培养物、悬液培养物、单层培养物和盖片单层培养物都可作固定材料。
悬浮细胞：
离心（800～1000r/min）→PBS/Hanks漂洗2～3次
贴壁细胞：
用镊子轻轻取出盖片→PBS/Hanks漂洗2～3次
注：漂洗的目的是去除血清和附着于细胞表面的残渣，防止其妨碍染色。
常用固定液
简单固定液：甲醇、乙醇、甲醛、醋酸、戊二醛、苦味酸、重铬酸钾、锇酸等
混合固定液：甲醇/醋酸固定液、FAA固定液、Carnoy固定液、Bouin固定液、4％多聚甲醛-PBS固定液等
甲醇/醋酸固定液：甲醇：冰醋酸为3：1，现用现配，适用于Giemsa染色。
FAA固定液：90mL 80％酒精＋5mL 冰乙酸＋5mL 40％甲醛，适用于盖片单层培养的细胞，固定效果好。
Carnoy固定液：较好的非水溶性固定液，60mL 纯酒精＋30mL 氯仿＋10mL 冰乙酸，适用于显示细胞化学成分。
2、细胞常用的染色方法
H.E（苏木精-伊红）染色法
原理：碱性染料苏木精和酸性染料伊红分别与细胞核和细胞质发生反应，使细胞的微细结构通过颜色而改变它的折射率，从而在光镜下能清晰地呈现出细胞的图像，并能提供良好的核浆对比染色。
染液配制：
染色步骤：
染色结果：细胞核染成红色，细胞质染成蓝色。
