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实时定量PCR技术综述
作者:佚名 来源:基莱生物科技 时间:2007-12-18

    下表列出了部分文献报道的TaqMan Probes技术所使用的酶和其它相关参数。

    Target

    P1

    P2

    Probe

    Enzyme

    退火温度

    延伸温度

    HCV 19 25

    27

    AmpliTaq DNA polymerase

    60℃

    60℃
    HIV 19 22

    32

    AmpliTaq Gold polymerase(Perkin-Elmer)

    60℃

    60℃
    Albumin 22 22

    26

    AmpliTaq Gold polymerase(Perkin-Elmer)

    65℃

    65℃
    16S rRNA 27 26

    28

    Taq DNA polymerase

    62℃

    62℃
    gB gene 18 18

    27

    AmpliTaq Gold polymerase (Perkin-Elmer)

    58℃

    58℃
    omlA 22 22

    21

    AmpliTaq Gold polymerase (Perkin-Elmer)

    62℃

    62℃
    lytA 21 21

    25

    Taq DNA polymerase

    60℃

    60℃

    四.Hybridization Probes技术要点
    Hybridization探针技术要求所用的热稳定DNA聚合酶没有5’→3’外切酶活性,以保证探针有恒定的浓度并能反复与模板杂交。
    Jochen,Wilhelm等(2001)研究了Taq酶5’→3’外切酶活性对基于Hybridization探针技术的定量PCR的影响,认为:(1)Taq酶5’→3’外切酶活性降解了部分探针;(2)Taq酶的stoffel片段(去除N端289个氨基酸)不具有5’→3’外切酶活性,其在高浓度Mg2+存在下,能获得较好的PCR动力学曲线(如下图);(3)stoffel片段因高Mg2+浓度造成的非特异性扩增可采用加入TaqStart antibody的方式消除。

    五.TaqMan探针与Hybridization探针技术的比较
    1. Hybridization探针技术的特异性高于TaqMan探针,因其信号的产生依赖于两个独立探针的特异性。但其在探针设计上需要更多的可选序列;
    2. TaqMan探针技术的开放性优于Hybridization探针技术,原因有二:(1)TaqMan探针技术的荧光标记系统是开放的,易从第三方获得,而Hybridization探针的荧光染料为罗氏专有,易受其控制;(2)TaqMan探针和Hybridization探针分别在ABI Prism7700和罗氏LightCycler上建立,因荧光标记和仪器检测波长的不同,限制了其在两种仪器上的通用性,目前已有文献报道将TaqMan探针用在LightCycler上,但未见报道Hybridization探针用在ABI Prism7700上,可能是ABI Prism7700价格较贵,不适合临床应用,而ABI GeneAmp 5700SDS只有一个检测波长(530nm);也可能Hybridization探针依赖于LightCycler的快速扩增。
    3. Hybridization探针分别标记两个探针,和TaqMan探针的同一探针三种修饰相比,修饰技术要求低,对修饰的质量控制更有利。

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