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藻蓝蛋白的提取、纯化及紫外可见光谱仪检测藻蓝蛋白纯度
作者:邱李莉 来源:藻蓝蛋白提取纯化测定专题资源 时间:2007-11-18

    8.以下由老师完成。用0.5MNaCL__0.5MNaOH溶液融胀20min,再用蒸馏水洗至中性。接着用0.5MHCL溶液融胀20min,再用蒸馏水洗至中性。后用0.5MNaCL__0.5MNaOH溶液融胀20min,再用蒸馏水洗至中性。最后用0.02M,pH6.5磷酸缓冲液平衡过夜。至此,层析柱准备完毕。
    9.剪一片刚好可以覆盖填料平面的滤纸,轻放入填料面。将准备好的层析柱中的缓冲液放出,待液面比填料高出大约只有1cm时,关闭柱开关。用胶头滴管吸取透析后的藻蓝蛋白粗提液,伸入柱液面内,沿管壁以很慢的速度将粗提液滴到液面中部,待液面升高后可以加快滴加速度。待液面离柱口只有大约2cm距离时,把开关完全打开,一边继续滴加粗提液。
    现象:开始有颜色分层,由上到下分别为蓝色,绿色,黄色
    10.待粗提液液面比填料高出大约只有1cm时,滴加50ml,0.02M,pH6.5磷酸缓冲液冲洗残余粗提液,不要一次加入,应先加少量把残余粗提液冲洗干净(至溶液澄清为止),再大量加入。最后加入0.5MNaCL—0.02M,Ph6.5磷酸缓冲液(流速:1.0ml/min)。
    第一次洗脱后现象:洗脱一段时间后出现红色层,最后出现明显的四个分层,由上到下分别为蓝色,绿色,青色,粉红色。
    11.小心观测,待有浅蓝色溶液流出时,马上开始收集,5ml一管(共收集了14管)。由于气温较高,边收集边将收集好的溶液倒入试管,用滤纸封口,排好顺序,贴上标签4℃保存待测。
    收集到试管后,试管内溶液的颜色变化:浅→深→浅
    12.取出冷冻保存的试管,以磷酸缓冲溶液为空白对照管,用分光光度计测其OD620nm,。实验结果见表1。
    13.根据A620nm可知,蛋白含量最高为第4管,取该管溶液稀释后用紫外可见光谱仪作200nm~700nm扫描,测藻蓝蛋白纯度。实验结果见表2及附件。

    六、 实验结果
    1. 表1:过柱后收集的提取液OD620nm

    管号

    A620nm

    1

    1.290

    2

    2.345

    3

    2.590

    4

    2.600

    5

    2.592

    6

    2.592

    7

    2.591

    8

    2.011

    9

    0.516

    10

    0.337

    11

    0.223

    12

    0.192

                    13          0.187
                    14          0.166

    2. 表2紫外可见光谱仪测藻蓝蛋白纯度

    管号 A280 A620 A620/A280
           4 1.206 0.614 0.509

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