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采用实时定量PCR方法对水源中细菌RNA进行精确定量
作者:未知 来源:生物秀 时间:2007-8-3

    采用接种沙门氏菌的水样评估实验方法
    对接种1-106/ml沙门氏菌的饮用水和池塘水样进行分析,发现对于invA和16S rRNA每CFU具备相同的DNA拷贝数(Fig. 3A and B)。细胞数目越少,越容易出现偏差,表明随着污染物水平的降低这一方法的精确度会降低。invA和16S rRNA每CFU的基因拷贝数对于饮用水分别为0.69和2.9,对于池塘水则分别为0.74和 5.8。当水中接种104到106细胞时,饮用水和池塘水样对应的16S RNA表达很相似(Fig. 3C)。然而,较低的接种数目显示饮用水样中16S RNA表达低。综合来说,每CFU对应16S rRNA的RNA拷贝数在饮用水和池塘水中分别为2.6×104和4.2×104。1拷贝inv基因对应16S rRNA的平均拷贝数在饮用水和池塘水样中分别为5×104和5.5×104。对于未接种的对照水样,invA没有扩增信号,而16S rRNA (RNA 和 DNA)却显示出具1 CFU/ml水样同样背景值

    实验结果与讨论
    Q-PCR是环境水样细菌检出和定量检测的新型方法(16,19)。定量方法建立在确定基因拷贝数的基础上,我们常采用基因组DNA来做标准品。但是,对于目的基因转录产物的定量这种方法便不可行了。在真核细胞中,我们可选取稳定表达的看家基因避免上述问题(3)。可是,细菌中并不存在这种稳定表达的看家基因。于是,我们发明了一种以Q-PCR为基础的定量方法,它不仅可以对细菌DNA精确定量,还可对环境水样中缺乏稳定表达看家基因的样本的RNA进行定量。据了解,这是首次成功的对原核细胞RNA进行定量。针对硅藻和海面植物的rbcL和rbcL基因的mRNA,我们也采用同样的方法用RNA标准品对其定量(25)。体外转录RNA被用做竞争性的RT-PCR的参照(29)。然而,采用随机引物容易造成RNA拷贝数的估测过高,原因是合成的短cDNA标准品缺乏引物结合位点。如果在Q-PCR过程中使用上述类似的引物合成DNA和RNA,也会出现相同的问题。虽然上述结果也可以用作Q-PCR的分析,但Q-RT-PCR过程中标准品的高估会造成对模板RNA拷贝数的估测高出实际值,这便使得此方法无法达到精确定量的要求。这是由于cDNA片断末端的不完整,和特异性引物结合位点缺失所造成的。为了避免上述问题,我们采用另一套引物用于RNA标准品的制备,这种引物扩增的片段比Q-PCR中得出的片段长(Table 1; Fig. 1)。其中,末端重叠是非常关键的,这使得合成cDNA的过程中的随机引物可得到延伸。另一个要考虑的问题是,DNase处理后DNA模板的残留(10)。为了减小此因素的影响,我们通过再次DNase处理使得RNA标准品中残留DNA浓度减低4个数量级。

    在纯净培养基和水样接种相关实验中(Fig. 2和3), 目标DNA可被精确定量。采用培养基接种,单个细胞的16S rRNA和invA基因拷贝数均比预期值高4倍(Fig. 2B).这是由于在对数增长期染色体会出现加倍的情况。在此快速扩增期之后,一拷贝的invA约对应8拷贝的16S rRNA基因。这和预期值是相符的,表明invA是单拷贝基因并在沙门氏菌有7个rrn操纵子(11)。因此,沙门氏菌的DNA的回收率约为100%(如样品离心,细胞裂解,DNA提取和纯化)。对于接种样品,回收率约为70%(如0.7拷贝的invA 和2.9—5.8拷贝的16S rRNA基因)。但现今研究中,从相同水样中提取革兰氏阴性菌的效率从未超过52%。核糖体16S rRNA的拷贝数在对数早期增加很快(18), 而实验的后期却出现了下降。每CFU的16S rRNA拷贝数界于20,000到500,000。核糖体数目和细菌的生长生理状况息息相关,单个细菌细胞的核糖体数目为6,700到71,000(2, 5, 8),和上述结果相符。既然纯化的小RNA被作为外参,那么16S rRNA的拷贝数就不会被过高评价。实际上,参照比样品的反转录效率以及后续的Q-PCR效率都要高(低估的可能性比高估的可能性要大)。因而,在复合培养基(如, BHI)中生长极快,得出的拷贝数稍高于实际值。采用基因组DNA做参照对葡萄球菌16S rRNA的研究表明,每拷贝16S rRNA基因对应35个16S rRNA的拷贝(23)。但是,Q-RT-PCR中一般不采用DNA作为参照,因为反转录的效率会在90%-1.4(4, 15)。这会造成目标RNA的过低估计。接种水样中的16S rRNA表达率和培养于纯净培养基静止期表现相同(Fig. 3C)。但接种少量菌体的饮用水样的对应值比较低。原因是菌体在饮用水培养条件下无法达到适宜的生长状态。另一方面,核酸的提取和纯化也是一个限制因素。

    本文以Q-PCR为基础,建立了一种不仅可以对DNA,还可以对细菌RNA进行精确定量的实验方法。细菌的生理生化状态是和每个细胞16S rRNA的数目息息相关的。这种新的方法被应用到环境样品的定量,样品活性监测,以及采用合适的靶序列,检测细菌的生理状态及潜在致病性。

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