三、实验材料、器具及药品

植物总RNA溶液。 紫外分光光度计、离心机、冰盒、口罩、手套、EP管架、超净工作台、移液器、DEPC处理过的枪头、EP管等。 5×M-MLV RT Buffer、 2.5mM dNTP mix 、 RNase抑制剂(30U/µL)、M-MLV Reverse Transcriptase、   Oligo(dT)₁₈ primer、无菌的DEPC水等。

四、实验步骤

注意：戴手套进行以下操作，严防RNase污染。
1．在超净工作台上吸取1ml无菌水到EP管中,加入2µl植物总RNA溶液,充分混匀，在紫外分光光度计上测定260,280nm的光吸收值(OD值),然后计算RNA的浓度,并分析其纯度。
分光光度（紫外吸收）法
（1）预热紫外分光光度计10—20分钟。
（2）取两只比色杯，一只装入1ml H2O溶液，作为空白溶液，用来校正分光光度计零点及调整透光度至100。
（3） DNA纯度及浓度测定：
①取2ul DNA或RNA样品加入另一比色杯，加dH₂O 至1000ul, 混匀。
②将两只比色杯置分光度计中，调入射光波长，分别用空白溶液调整零点（T为100，OD为0），测定待测样品液在260nm、280nm、230nm的OD值。
③计算浓度：对于双链DNA 1.0 OD₂₆₀=50ug/ml,  
                       对单链RNA1.0 OD₂₆₀=40ug/ml。
④测定纯度： v纯的RNA溶液其OD₂₆₀/OD280的比值应介于1.7至2.0，OD₂₆₀/OD₂₃₀的比值应大于2.0。 ØRNA样品OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值太小，说明有蛋白或苯酚污染。比值大于2.0，则可能被异硫氰酸胍污染。 ØOD₂₆₀/OD₂₃₀的比值小于2.0时表明有小分子及盐存在。
纯的DNA溶液其OD₂₆₀/OD₂₈₀应为1.8，OD₂₆₀/OD₂₃₀应大于2.0。
ØOD₂₆₀/OD₂₈₀大于1.9时，表明有RNA污染，小于1.6时表明有蛋白质或酚污染。
ØOD₂₆₀/OD₂₃₀小于2.0时，表明溶液中有残存的盐和小分子杂质，如核苷酸、氨基酸、酚等。

2．在DEPC处理过的Ep管中加入约4µg总RNA和1µl 0.5µg/µl的 Oligo(dT)₁₈ primer,小心混匀, 70℃保温5分钟,立即浸入冰水中。
3．按次序分别加入下列试剂：
　　5µl 5×M-MLV RT Buffer
　　2µl dNTP mix(2.5mM) 
        1µl RNase抑制剂(30U/µL)
　　1µl M-MLV Reverse Transcriptase 
         然后加DEPC水到25µl.
4． 小心混匀，室温离心5秒，将所有溶液收集到管底， 37℃保温1小时。 　　
5． 90℃处理5分钟，冰上冷却。　
6． 用于PCR扩增或-20℃保存备用.

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