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杂交瘤细胞的制备
作者:未知 来源:生物秀 时间:2007-7-24

     
    融合
    方法一:
    1.将1ml 40%的PEG液一滴滴加入到细胞团中,在60秒内加完,同时并不断轻微转动离心管或用手指轻弹离心管。
    2.在不断转动离心管中加1ml无血清培养液,60秒钟内加完。
    3.于5分钟内慢慢加完20ml无血清培养基。此时细胞对机械损伤非常敏感。
    4.离心(800转/分,8分钟),去上清,用完全培养液10ml悬浮,轻轻混匀。
    5.取96孔板,每孔加50微升。
    6.取等体积细胞悬液,向另一96孔板中加50微升。
    7.送入5%CO2温箱中37℃培养,24小时后更换成HAT选择性培养液。
     
    方法二:
    1.加0.2ml 43%的PEG于离心管中。 
    2.用预先消毒的细玻璃针伸入管中轻轻搅动细胞团。
    3.室温中置2分钟。
    4.加入10ml完全培养液。
    5.800转/分离心5分钟。
    6.用2倍HAT培养液培养悬浮细胞,取24孔板,每孔中加0.5ml,另96孔板每孔中加0.1ml。
    7.5%CO2温箱,37℃,一周后第一次更换培养液,培养板中预先接种有饲养细胞,加2×HAT选择培养液与原等量培养液混合后,即成为1×的HAT培养基。
     
    融合后细胞培养
    1.融合后7~10天用HAT培养液变量换液,以后每隔2~3天半量换液一次。
    2.两周后可改用HT培养液半量换液,或仍用HAT培养液。
    3.2~3周后出现杂交细胞集落,细胞个大,圆且透明。
    4.待集落增殖生长至1/3孔时,应进行抗体检测。
     
    克隆化培养
    [软琼脂培养]
    1.称1g琼脂粉,加入到100ml双蒸水中,高压蒸气灭菌,4℃冰箱保存。
    2.使用前,1%的琼脂和2×的DMEM培养液在45℃水浴中分别温浴。
    3.二者等体积混合后,立即加入1.5×107小鼠脾细胞,混匀。
    4.立即到入平皿中,每平皿(直径10cm)加10ml,室温中置15分钟。 
    5.另取杂交瘤细胞悬液和0.5%琼脂等体积混合(0.25%琼脂),加2ml到预先铺有底层琼脂的瓶皿内。
    6.CO2温箱培养。
    7.10~15天后,有细胞集落形成,适时移入24孔培养板中扩大培养。如用琼脂糖,底层浓度为0.6%,上层为0.3%琼脂。
     
    [有限稀释法]
    1.制备有饲养细胞底层的细胞培养板。
    2.收集细胞、计数阳性培养细胞。
    3.细胞悬液调至5~10个细胞/ml。
    4.96孔板中每孔加0.1ml。
    5.CO2温箱培养一周后,半量换液,继续培养。
    6.适时检测每孔培养上清,挑选呈阳性培养孔的细胞继续进行有限稀释,直至确信孔中细胞为单克隆为止。
    7.进行扩大培养。
     
    5)抗体的检测
    常用方法:免疫荧光试验、放射免疫试验(RIA),酶联免疫吸附试验(ELISA)等。

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