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过氧化物酶同工酶聚丙烯酰胺凝胶电泳
作者:未知 来源:生物秀 时间:2007-6-10

    四、实验步骤:

    ①    安装制胶模具(教师演示,学生安装)
    注意事项:a、在整个过程中要轻拿轻放,以免将玻璃板弄碎。
    ②制作分离胶(浓度10%)
    分离胶配方(浓度10%):pH8.9 Tris-HCl溶液:0.8ml  
               分离胶PAG溶液:1.2ml 
                蒸馏水:1.6ml 
                10%TEMED:40μl 
                 %AP: 40μl
    将上述溶液充分混匀,立即全部倒入安装好的制胶玻板中,为使分离胶界面平整,可在倒入分离胶后约5min后在其表面沿高板缓慢均匀加入0.5ml蒸馏水并将电泳槽轻轻敲击桌面。再静置40min左右,让分离胶凝聚完全。
    ③制作浓缩胶(浓度2.4%)
    浓缩胶配方(浓度2.4%):pH6.7 Tris-HCl溶液:0.42 ml 
                   浓缩胶PAG溶液:1.25ml 
                   40%蔗糖溶液:1.25ml 
                   10%TEMED:30μl 
                    10%AP: 30μl
    将上述溶液充分混匀,在聚合完全的分离胶上,倒入浓缩胶,(注意在倒入浓缩胶前要去掉分离胶表层的水)同时插入梳子,直到溶液装满和梳子插平为止。再静置40min左右,浓缩胶聚合完全后为乳白色。
    (注意事项:A、在整个过程中要将制胶模具垂直方在桌面上,不容许倾斜。B、充分混匀的(分离胶或浓缩胶)溶液应尽快用移液枪延高板的一侧慢慢加入胶板中
    C、胶制作完成后,松开卡板取下橡胶皮,然后再用卡板卡紧胶板。要注意低板在内侧。)
    ④制样:取适量(2g)的马铃薯于研钵中,加1ml的PBS(磷酸缓冲液,pH7.4),于冰上研磨至匀浆状,收集在1.5ml的离心管中,在台式离心机中以8000rpm离心5min,取上清,即为粗酶提取液,其中含有所需的APX。另外,豆芽研磨可取4g左右,同样加入1ml的PBS。
    ⑤点样
    在浓缩胶聚合完毕后,小心取出梳子,两拇指和食指捏住梳子的柄,其余三指顶住制胶框两侧,匀速地拔出梳子,然后向电泳槽中倒入预冷的电极缓冲液(原液要稀释10倍),缓冲液要没过低板。
    点样前,要对样品进行预处理,即把粗酶提取液与甘油溴酚蓝指示剂以4:1混合,用50μl的微量点样器吸取样品20μl,将点样器的针头小心插入到点样孔底部,慢慢注入样品,要注意防止漂样。
    ⑥电泳
    点样完毕后,连接好导线(正负电极不要接反,红色为正极,黑色为负极),将电压调至70 V,当溴酚蓝标志线移至浓缩胶与分离胶分界处,将电压调至150V,电泳2-3小时,当溴酚蓝标志线刚好跑出胶板时,结束电泳。
    ⑦取胶
    切断电源,取出缓冲液并低温保存,可重复使用2次。然后松开卡板,取出凝胶板,用解剖刀扁平部分插入玻板的一角(是分离胶的一角),轻轻撬去一块玻板,用刀切掉分离胶右下角以示点样顺序,轻轻撬起分离胶,使之滚入染色培养皿中。
    ⑧染色
    APX染色步骤如下:先用自来水溶液润洗两遍,再加入30-40ml的染色液,室温下放置5-20min,至显色完全。
    ⑨清洗玻璃板、胶皮、电泳槽。
    五、注意事项:
    a、在整个清洗过程中要轻拿轻放,以免将玻璃板弄碎。同时,清洗玻璃板不容许用强酸、强碱以及酒精溶液,一般用清水加一点洗涤剂进行清洗,然后用除离子水或蒸馏水润洗。
    b.在整个实验过程中,要注意实验安全,凝胶、联苯胺等试剂有毒,应戴乳胶手套或一次性手套操作。
    c.在电泳过程中不允许用手去触摸电极缓冲液,以免触电。

    附表1

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