(一)尾部采血：
动物如不麻醉则需以保定器保定。将尾巴置于40℃温水中或以加热灯照射5至10分钟，使尾巴血管扩张。以23或21G的针头由尾巴左右两侧之尾静脉或腹侧的尾动脉抽血，或仅以21G的蝴蝶针头插入尾动脉中，确认有血液流出后再以离心管承接。
(二)隐静脉（Saphenous vein）采血:
将动物徒手保定或者将动物塞进适当直径与长度的透明塑料管，藉由固定且紧绷大鼠大腿与尾巴之间的皮肤来伸直其大腿，剔除大腿外侧之皮毛，即可在踝关节的上下端见到隐静脉，将剃毛部位以酒精消毒，以23 G的针头刺开隐静脉，以毛细管收集流出之血液，采得足够之血量后将动物的后脚弯曲以减少开创部位的血流量，再将毛细管内的血液送入微量离心管，最后再以灭菌棉花直接加压开创部位止血。经过24小时候相同部位可以继续采血。
(三)颈静脉（Jugular vein）采血：
熟练的操作者可以在大鼠清醒时由颈静脉简单的采得血液，动物所受到的紧迫相较于眼角采血或尾静脉采血，会比较低，但建议初学者先将动物镇静或麻醉后再进行采血。将大鼠保定后保持腹部朝上、头部朝向采血者，将大鼠的头部保持笔直并将右侧颈部的毛发剔除，沿着下颚平行于正中线以21 G的针头以极低角度下针，以脖子与肩膀形成的夹角为下针点缓慢推进，待有血液流入针筒后，再缓慢回抽。抽血完成后通常不会造成出血或血肿。
(四)眼角采血： 可麻醉或徒手保定。采血时以巴士德吸管由眼窝前端边旋转边向、向后插入眼窝内静脉丛，待巴士德吸管可见出血时，倾斜巴士德吸管，使血液流入巴士德吸管中。采血时间尽量缩短以避免凝血，采血后需注意止血。采血过程不可过于粗暴而伤及眼球或哈氏腺。
(六)心脏采血：
动物需经安乐死或麻醉后才可进行心脏采血，采血结束也需将动物安乐死。将动物仰卧置于台面，下针的位置位于剑状软骨突下方，约与腹部呈15至30度角向胸腔缓缓推入，一发现有血液流入针筒，即固定针头开始缓慢抽血。或直接由胸腔下针，由胸腔后端1/3处，自胸骨左侧缘垂直经刺入肋骨间而达心脏。
(五)斩首采血法：
此法取得之血液因可能会受动物的其它体液污染。将大鼠摇晃或麻醉使其无法动弹，再以强力的剪刀或断头器将动物斩首后迅速以容器装盛。
四、胃管灌注
胃管灌注能使药剂经胃管直接投入胃中，进行胃管灌注时不可使用一般的针头，需使用经处理过的球型针头，可避免对动物造成伤害。插入之前需先测量动物由口腔至胃的距离选用适当长度的胃管，以避免插入胃管时插入过深造成动物胃的伤害，或是插入过浅使灌注物无法达到胃部。以注射针筒吸取药物，再保定动物，将胃管球型头置入动物口腔中，经喉背滑入食道到达胃内部，如果在插入过程遇到阻碍，需立即拔出，重新再插入，胃管插入胃后，迅即注射，注射完立刻拔出胃管。胃管灌注建议的灌注量为20 ml/kg，0.25公斤以上的大鼠仅能灌注5 ml。
五、注射
大鼠注射建议使用大于23 G的针头，且尽量使用较短的注射针。
(一)肌肉注射：
事先以注射针筒吸取欲注射的剂量。一人保定动物，另一人执行注射。一般注射部位为大腿后侧肌肉。以酒精消毒注射部位后，以注射针头插入，试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。确定针头插入肌肉后，慢慢将药剂推入，推入的速度应避免太快，以防组织损伤。肌肉注射的建议注射量为1.0 ml/kg，0.5公斤以上的大鼠仅能注射5 ml。
(二)皮下注射： 
事先以注射针筒吸取欲注射的剂量。保定动物，注射部位颈部上方皮肤需以酒精消毒。以拇指与食指将颈部上方皮肤拧起，以针头插入皮肤拧起后产生之凹陷处，试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。确定插入正确位置后，缓缓将药剂推入。皮下注射建议的注射量为20 ml/kg，可分成2至3处区域注射。
(三)腹腔内注射：
事先以注射针筒吸取欲注射的剂量。保定动物，头部朝下腹部朝上，注射针头以30度角插入腹中线右侧。试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。
