(5)静脉注射
小白鼠和大白鼠:一般采用尾静脉注射,鼠尾静脉有三根,左右两侧及背侧各一根,左右两侧尾静脉比较容易固定,多采用,背侧一根也可采用,但位置容易固定。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中,使尾巴露出,尾部用45~50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,用中指从下面托起尾巴,以无名指和小指夹住尾巴的末梢,右手持注射器连4(1/2)号细针头,使针头与静脉平行(小于30℃),从尾下四分之一处(约距尾尖2-3厘米)处进针,此处皮薄易于刺入,先缓注少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续注入。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射,应尽可能从末端开始,以后向尾根部方向移动注射。
表1 几种动物不同给药途径的常用注射量(毫升)
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注射途径 |
小鼠 |
大鼠 |
豚鼠 |
兔 |
狗 |
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腹 腔 |
0.2-1.0 |
1-3 |
2-5 |
5-10 |
5-15 |
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肌 肉 |
0.1-0.2 |
0.2-0.5 |
0.2-0.5 |
0.5-1.0 |
2-5 |
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静 脉 |
0.2-0.5 |
1-2 |
1-5 |
3-10 |
5-15 |
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皮 下 |
0.1-0.5 |
0.5-1.0 |
0.5-2 |
1.0-3.0 |
3-10 |
(六)经口给药
在急性试验中,经口给药多用灌胃法,此法剂量准确,适用于小白鼠、大白鼠、家兔等动物。
小鼠、大鼠(或豚鼠)用输血针头或小号腰穿针头,将其尖端斜面磨剂,用焊锡在针尖周围焊一圆头,注意勿堵塞针孔,即成灌胃针;亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特制的塑料毛细秋,作为导管。灌胃时将针按在注射器上,吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定,右手持注射器,将灌胃针插入动物口中,沿咽后壁徐徐插入食道。动物应固定成垂直体位,针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时,应立即停止进针或将针拔出,以兔损伤或穿破食道以及误入气管。
一般当灌胃针插入小鼠3-4cm,大鼠或豚鼠4-6cm后可将药物注入。常用的灌胃量小鼠为0.2-1ml,大鼠1-4ml,豚鼠为1-5ml。
表2 常用实验动物的最大给药量和使用针头规格
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动物名称 |
项 目 |
灌 胃 |
皮下注射 |
肌肉注射 |
腹腔注射 |
静脉注射 |
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小白鼠 |
最大给药量 |
1ml |
0.4ml |
0.4ml |
1ml |
0.8ml |
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大白鼠 |
最大给药量 使用针头 |
1ml |
1ml 6 |
0.4ml 6 |
2ml 6 |
4ml 5 |
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鼠 |
最大给药量 使用针头 |
3ml |
1ml 6(1/2) |
0.5ml 6(1/2) |
4ml 7 |
5ml 5 |
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兔 |
最大给药量 使用针头 |
20ml |
2ml 6(1/2) |
2ml 6(1/2) |
5ml 7 |
10ml 6 |
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猫 |
最大给药量使用针头 |
20ml |
20ml 7 |
2ml 7 |
5ml 7 |
10ml 6 |
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蛙 |
淋巴囊注射 最大注射量 1ml/只 | |||||
4.采血方法
采血方法的选择,决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。例如,研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱,需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及 K+、Na+、CI-离子浓度,必须采取动脉血液。 采血时要注意:⑴采血场所有充足的光线;室温夏季最好保持在25-28℃,冬季,15-20℃为宜;⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒;⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥;⑷若需抗凝全血,在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.


