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T淋巴细胞转化试验(T Lymphocyte Transformation Test)
作者:未知 来源:北大医学部 时间:2006-10-21
    一、  基本原理
        T细胞在体外培养时,受到有丝分裂原(如PHA、ConA)刺激后,可出现细胞体积增大,代谢旺盛,蛋白和核酸合成增加,即向淋巴母细胞转化和增殖。淋巴细胞转化率的高低可以反映机体的细胞免疫水平,因此可作为测定机体免疫功能的指标之一。淋巴细胞转化试验结果的读取可以有形态计数法、MTT法和同位素法三种。

        MTT法即四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法。MTT是一种噻唑盐,化学名3-(4,5-二甲基-2-噻唑)-2,5-二苯基溴化四唑,水溶液为黄橙色。小鼠脾细胞受到ConA作用后发生增殖活化,其胞内线粒体琥珀酸脱氢酶活性相应升高,MTT作为其底物参与反应,形成蓝色的甲臜(Formazan)颗粒沉积于细胞内或细胞周围,经盐酸─异丙醇溶解后为蓝色溶液,可用酶标测定仪测定细胞培养物的OD值,测定波长570nm。根据OD值的大小计算反应体系中细胞增殖程度。
        3H-TdR 掺入法:细胞增殖的基本条件或前提为细胞质和细胞核的复制,这是正常细胞增殖过程缺一不可的前提。一般来说,一个细胞周期可大致分为四期,即G1期、S期、G2期和M期。其中S期为DNA合成期,主要功能活动为DNA合成。3H-TdR即(甲基-3H)胸腺嘧啶核苷([3H-methyl]thymidine),是DNA合成的前体。加入细胞培养液中后被细胞摄取作为DNA合成的原料。细胞合成的DNA越多,则所掺入的3H-TdR就越多,因此,检测所掺入的3H-TdR就可反映细胞增殖的程度。该方法与MTT比较,具有灵敏度高、准确性好的特点,但由于该方法有同位素污染问题,因此,从安全角度考虑,我们实习中仍用MTT法。

    二、  实验材料
    1.    ICR小鼠(北京大学医学部实验动物中心提供)
    2.    RPMI1640培养液, Hank’s液
    3.    刀豆蛋白A(Concanvalin A, ConA),用RPMI1640液配成1mg/ml,分装小瓶,冷冻保存
    4.    MTT  (1mg/ml, 溶于Ph7.2的PBS中)
    5.    2.5%碘酒、75%酒精
    6.    无菌尖吸管和刻度吸量管
    7.    无菌解剖器械
    8.    96孔平底培养板
    9.     5%CO2培养箱(美国NAPCO公司产品)
    10. 酶标测定仪 (美国BioRad公司产品)

    三、  实验方法
    1.小鼠脾细胞悬液的制备:
    取一个灭菌的平皿,加入5ml Hank’s液。颈椎脱臼法处死小鼠,取脾脏,放入平皿中,在钢网上研磨并过筛,制成细胞悬液。取出100ml用于计数。将其余细胞悬液移入一离心管中,离心1500rpm,7min,(或1000rpm,10min)弃去上清,用RPMI1640培养液稀释,制成2.5×106 / ml的脾细胞悬液,然后加入ConA使每孔最终浓度为2mg/ml,同时做不加ConA的阴性对照孔。
    2.将上述细胞悬液加入96孔平底培养板中,每孔0.1ml。
    3.将培养板放入含有5%CO2的37℃培养箱中培养48-72小时,在培养结束前4-6小时,于培养板各孔内加入1mg/ml MTT液,10ml/孔。37℃培养6小时。
    4.各孔内加入0.01M盐酸—异丙醇110ml,30分钟内(或加2%SDS 100ul/孔,过夜)用酶标测定仪测OD值,测定波长570nm。

    四、  实验结果
    将实验组和对照组三个复孔的OD值平均。
    转化值=实验组的平均OD值-对照组的平均OD值。

    五、注意事项
    (1)由于本实验需要培养3天,才能观察结果。因此,在操作时应注意无菌操作,避免细菌污染,导致实验的失败。
    (2)细胞操作要轻柔、迅速,以免细胞损伤影响实验结果。
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