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免疫细胞化学技术
作者:未知 来源:生物秀 时间:2006-10-19

    (1)  酶标抗体法
    ¨  通过共价键将酶结合在抗体上,制成酶标抗体,与标本进行反应后,再用酶组化法将酶显色,使之生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒,以供光镜和电镜观察。
    –   优点:切片能长期保存、反复观察,适于镜下半定量分析。
    –   缺点:酶与抗体形成的共价键,可损害抗体和酶的活性;易产生非特异染色。
    (1)  酶标抗体法——直接法
    ¨ 将酶直接标记在一抗上,然后直接与相应抗原特异地结合。形成抗原-抗体-酶复合物,最后用底物显色剂显色。
    (1)  酶标抗体法——间接法
    ¨   将酶标记在二抗上,先将一抗与相应的抗原结合,形成抗原抗体复合物,再用二抗(酶标抗体)与复合物中的特异抗体结合,形成抗原-抗体-酶标抗体复合物,最后用底物显色剂显色。
        酶标抗体间接法的操作步骤
    ¨       标本准备:
    –       石蜡脱蜡至水;
    –       冰冻切片浸入4°C丙酮固定10min,0.01M PBST漂洗,5min×3;
    –       细胞爬片先用PBS洗,然后4°C丙酮固定10min,再0.01M PBST漂洗,5min×3;
    ¨       石蜡切片需要进行抗原修复,其它标本则不用;
    (2) 酶标抗体间接法的操作步骤(续)
    ¨         封闭内源性过氧化物酶:3%H2O2-甲醇溶液室温孵育5~10min (湿盒内) ;
    ¨         0.01M PBST漂洗,5min×3;
    ¨         5~10%正常山羊血清(0.01M PBS稀释)封闭,室温孵育30min (湿盒内) ;
    ¨         倾去血清勿洗,加1%BSA(PBST配制)稀释的一抗, 37°C孵育60min 或4°C过夜(湿盒内);
    (2) 酶标抗体间接法的操作步骤(续)
    ¨         0.01M PBST漂洗,5min×3;
    ¨         加HRP标记的二抗室温孵育lh或37℃30min ;
    ¨         加0.01%H2O2~0.05%DAB显色 (显色液应新鲜配置);
    ¨         经PBS漂洗3次后,梯度酒精脱水,二甲苯透明,明胶甘油封片,显微镜观察。
    (2) 非标记抗体酶法——酶桥法
    ¨   首先用酶免疫动物,制备效价高、特异性强的抗酶抗体;
    ¨   以二抗作桥,将抗酶抗体联结在一抗上;
    ¨   再将酶结合在抗酶抗体上,经显色显示抗原的分布
    –    优点:任何抗体均未被酶标记。酶是通过免疫学原理与酶抗体结合的。避免了共价连接对抗体和酶活性的损害,提高了方法的敏感性,而且节省一抗的用量。但抗酶抗体不易纯化。
    几点说明
    ¨         一抗(假设来自种属A)的稀释度可大些,使抗体的两个Fab段均与组织抗原结合。
    ¨         二抗——桥抗体(抗种属A的IgG抗体)应过量,使其Fab段一个与一抗结合,另一个则游离。
    ¨         因抗酶抗体与一抗均系种属A IgG,具有相同的抗原性,所以桥抗体游离的Fab能与抗酶抗体结合,起桥作用,将其连接在与组织抗原结合的一抗上。
     
    (2) 非标记抗体酶法——PAP法
    ¨   与酶桥法相似,不同的是,PAP法将酶桥法的第3、4步并为1步,用PAP复合物代替;
    ¨  PAP是离体制备的复合物(HRP--抗HRP)。
    ¨  显色与酶桥法相同,PAP复合物中的过氧化物酶催化底物水解,形成不溶性终产物。
     
    PAP法评价
    ¨  PAP法比直接法、间接法、酶桥法更敏感。特别适用于石蜡切片中微量抗原和抗原性减弱抗原的检测。
    –   缺点:步骤较多,时间较长,不适用于临床常规检查。
    ¨  由于常做石蜡切片,故可用于回顾性研究。
    (三)  亲和组织化学法
    ¨  是以一种物质对某种组织成分具有高度亲合力为基础。
    ¨  这种方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗体)在细胞或亚细胞水平的定位。
     生物素—抗生物素染色法
    【原理】
    ¨  生物素(biotin)又称维生素H,是一种小分子维生素,分子量为244,是转氨甲酰基化过程中的辅酶。
    ¨  抗生物素(avidin),又称卵白素或亲和素,是一种分子量为67000的碱性蛋白,对生物素具有很强的亲和力,比抗原抗体间的亲和力要高出100万倍。它由4个亚基组成,每个亚基都有生物素的结合位点。
     
    ¨  两者均可与抗体等大分子生物活性物质相偶联,又可被酶类等多种示踪物所标记,形成生物素-抗生物素系统。
    –   该系统一端偶联大分子生物反应体系,另一端连结标记物,后者加入酶的底物,产生颜色反应。
     
    (1)标记抗生物素—生物素法(labelled avidin-biotin method, LAB):分为直接法和间接法。
    ¨   直接法
         
    用生物素标记第一抗体,与抗原结合;酶标记抗生物素,与生物素结合,然后进行酶呈色反应。
    ¨  间接法

    用生物素标记二抗,酶标记抗生物素,先用第一抗体与组织抗原结合,再将第二抗体与第一抗体相连结,最后进行呈色反应。
    (2)桥抗生物素一生物素法(bridge avidin-biotin method,BRAB)
    –    此法是用生物素分别标记抗体和酶,以抗生物素为桥,把二者连接起来,进行呈色反应。
    (3) 抗生物素-生物素-过氧化物酶法
    (ABC法)
    ¨   ABC法是在BRAB和LAB的基础上改良的方法。
    ¨   ABC复合物是将过氧化物酶结合在生物素上,再将其与过量的抗生物素反应而制备的。
    ¨   分为直接法和间接法。
    –    直接法是生物素标记的一抗与ABC复合物结合;
    –    间接法是生物素标记的二抗与ABC复合物结合。
     
    ABC法的评价
    ¨  敏感性强:ABC法比PAP法敏感性高20~40倍。
    ¨  特异性强,背景染色淡:由于敏感性高,一抗和二抗都可被稀释至可能的浓度,减少了非特异染色。
    ¨  方法简便,节约时间。可由PAP法所需的2天缩短至几个小时。 
    ¨  由于生物素与抗生物素具有与多种示踪物结合的能力,可用于双重或多重免疫。

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