糖类从组织化学技术的角度分类与生物化学的分类并非一致。从组织化学的角度，糖类可略分为多糖、中性糖液物质和酸性粘液物质及粘蛋白和粘脂质。
多糖主指糖原，是由许多葡萄糖分子以糖苷键组成的聚合体。当机体死亡，即很快分解为葡萄糖。
一、过碘酸—Schiff氏法（简称P.A.S）
操作方法：
（1）石蜡切片脱蜡至水。
（2） 0.5%过碘酸水溶液5分钟。或1%过碘酸95%酒精溶液（过碘酸再结晶应重新配制使用）。
（3）蒸馏水洗，70%酒精洗。
（4）Schiff氏液15-30分钟。（Schiff氏液从冰箱取出升至室温使用）
（5）流水冲洗10分钟。
（6）苏木素浸染细胞核2-3分钟。
（7）脱水、透明、封盖。
结果：糖原呈红色，细胞核呈蓝色。
试剂配制：
（1）0. 5%过碘酸（HIO4）水溶液或70%酒精溶液。
（2）Schiff氏试剂。
碱性品红 1g
蒸馏水 200ml
1N盐酸（98.3ml比重1.16盐酸，加入蒸馏水成1000ml） 20ml
偏重亚硫酸钠或钾 1g
碱性品红1g加入200ml蒸馏水，搅拌加热沸腾，待冷却至50℃过滤，加入当量盐酸至25℃时加入偏重亚硫酸钠。置于暗处，两天后溶液变桔黄色或草黄色，然后加入少量活性碳并震荡、过滤，此时溶液应为无色。保存冰箱备用。溶液如显浅红色或草黄色，染色效果较差。
注意事项：
1、 糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。
2、如用无水酒精作糖原的固定剂，有它的弊病，因无水酒精渗透较慢，而且容易产生极化，（极化是糖原颗粒趋向于细胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果较佳，其配法如下：
苦味酸饱和于95%酒精 85ml
40%甲醛 10ml
冰醋酸 5ml
3、各种试剂必须化学纯，亚硫酸钠须有浓厚气味，器皿必须洁净而干燥，染色缸亦是。
4、如果Schiff氏试剂，在经过活性碳吸附漂白后不显无色，首先应考虑试剂中的偏重亚硫酸钠是否失效。如果偏重亚硫酸钠气味不浓，使用时可考虑适当的增加用量。其次考虑碱性品红本身，常常虽属同一生产厂家，但不同批号，其效果就可能不同，应特别引起注意。
二、粘液染色法：
粘液一般有以下几点特性：
（1） 对盐基性染料有亲合力，因此在HE染色中、切片上的粘液呈污秽蓝色。
（2） 对某种盐基性人工合成染料如硫堇或甲苯胺蓝有异染性。
（3） 遇醋酸发生沉淀，胃粘蛋白则除外。
（4） 溶于弱碱溶液。
常用的粘液染色有以下几种：
1、P．A．S染色法：
操作方法同前，结果；中性粘液性物质，某些酸性粘液物质呈红色，核呈蓝色。
2、AB/P.A.S染色法：
该种方法的特点是能同时显示出酸性和中性粘液物质。
操作方法：
（1）切片常规脱蜡入水。
（2）3%醋酸液洗2分钟，入1%阿利新兰醋酸液（PH2.5）10-20分钟。
（3）蒸馏水洗。
（4）按P.A.S染色程序。
（5）苏木素淡染2-3分钟，水洗。
（6）常规脱水、封片。
结果：酸性粘液呈蓝色，中性粘液呈红色，混合性粘液呈紫色，细胞核呈淡蓝色。
3、高铁二胺（HID）/AB染色法：
该种方法的特点是能同时显示酸性粘液和硫酸粘液物质。
操作方法：
（1）切片常规脱蜡入水。
（2）入高铁二胺溶液反应18-24小时（或37℃过夜）。
（3）蒸馏水洗。
（4）接AB（PH2.5）染色程序。
（5）常规脱水封片。
结果：酸性粘液物质呈蓝色，硫酸粘液呈棕黑色。
试剂配制：
（1）1%阿利新兰醋酸液（PH2.5）
阿利新兰 1g
冰醋酸 3ml
蒸馏水 97ml
（2）高铁二胺（HID）液
二甲基间苯二胺二盐酸盐 1.2g
二甲基对苯二胺二盐酸盐 0.2g
40%氯化铁 1.4ml
蒸馏水 50ml
临用时新配。溶液PH值1.5-1.6
