这种混合固定液通常简称“AAF”固定液。使用较广泛，配制时一般可以酒精作为溶剂，然后加入福尔马林，醋酸。酒精可因组织种类不同而采用不同的浓度，在常规切片中，我们常采用浓度为95%酒精。
此液对糖原的固定佳良，就是说在蛋白质成分完全固定之前可以防止糖类溶解，加入醋酸以保证蛋白质的固定，由于酒精和福尔马林二者皆为迅速穿透的试剂，这是一种相当好的快速固定剂，对临床外检工作特别有利，福尔马林对组织染色效果较好，醋酸可以防止酒精而引起的收缩。常温下，5毫米厚的组织固定4小时即可，加温（60℃）条件下，一般组织半小时内可固定良好，固定后组织直接放入95%酒精中脱水。
AAF固定液的缺点是组织固定后对细胞膜上的蛋白质和细胞内的某些结构有一定破坏作用，而对免疫组织化学染色有一定影响（详见免疫组织化学技术一章）。
其它常用固定液配方
10%甲醛生理盐水液
配方：福尔马林 100ml
氯化钠 9.0g
蒸馏水 900ml
Gendre液
配方：苦味酸饱和于95%酒精溶液 80ml
福尔马林 15ml
冰醋酸 5ml
用此液在室温下3－4小时即可使糖原固定良好。
缓冲福尔马林液
配方：福尔马林 10ml
磷酸二氢钠（NaH2PO4·2H2O） 0.4g
磷酸氢二钠（Na2HPO4） 0.65g
蒸馏水 100ml
缓冲福尔马林固定剂具有能较好地保存细胞结构和某些细微结构，适于免疫组织化学染色和电镜观察，并且可较长时间保存组织（半年至一年）而又不影响制片和染色。是近年来越来越受到重视的固定剂。
大体标本的处理和固定
解剖所得的脏器标本，可提供临床病理讨论及教学和科研之用，除对有典型的病变脏器制成标本外，对有重要病变的脏器亦应固定保存，条件允许可将全部脏器切成需要的大小保留。
通常所用的固定液是10%甲醛（即福尔马林）水溶液（市售甲醛溶液用水稀释1：9）。这样既可使组织内的蛋白和脂类等成分凝固，又可使组织不致腐烂。为了保存组织内的各种水溶性成分、如粘液、肝淀粉和尿酸盐结晶等，应在剖验当时将部分脏器切成组织块放入纯酒精液固定，切不可着水。
只有细心且有计划地进行尸体剖检，并在切除器官后仔细处理才能获得良好地陈列标本。剖检过程中的粗心和草率，很容易破坏一个有价值的标本。因为今天的常见病明天会成为罕见病例，为此重要的是保持这些病理标本原有的形态和色泽。有时外科手术摘除的标本，如经适当处理也可以成为最好的陈列标本。
常规的福尔马林固定后，大体标本常呈灰褐色，用下述方法拟可保存大体标本的色泽，使之更接近自然色彩。
配方：甲醛 20ml
硝酸钾 3g
醋酸钾 3g
生理盐水 加至 100ml
固定时间视标本的大小而定，一般24－72小时。固定后经充分的流水冲洗后再放入下述保存液中长期保存。
甘油 20ml
醋酸钾 4g
麝香草酚 0.2g
蒸馏水 加至 100ml（PH＝8）
