[方法与步骤]
1．实验仪器的准备
打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。
2．连通液导系统并制压
将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住(注意：液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120 mmHg时即可关闭三通管。观察压力是否发生变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30～130 mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。
3．动物的准备
1)麻醉动物
取家兔一只，称重并剪去耳缘静脉上的被毛。用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20％(或25％)氨基甲酸乙酯(1 g／kg体重)进行麻醉。注射时注意：先从耳缘静脉尽可能远心端注射(第一次注射不成功时，可稍向近心一些注射)，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
2)固定与剪毛
将动物背位固定于手术台上，用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。
3)切开皮肤
术者一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。
4)分层分离肌肉
术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉(距离要尽可能近)，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向(沿肌肉纤维走向)将肌肉层剪开一个小口(亦可用止血钳创开口)。用剪刀或止血钳将创口纵向扩大，再用止血钳夹住少许肌肉，向两侧分开肌层。继续用两把止血钳夹住下层气管上方的少许肌肉，轻轻提起，同法剪开并扩大肌肉创口。如此层层分离肌肉，直至看见肌肉层下方的气管(如果创口不够大，亦可用两手示指深入创口后再向前后方撕裂肌膜，使创口扩大)。用止血钳向气管两侧拉开最后一层肌肉，暴露出气管(图4—19)。手术时，注意切口不可偏离气管上方，不可横向剪断肌肉，以免造成血管断裂而出血。切口也不要过于扩大，以免造成气胸。如果发现肌肉或血管有少量出血，可用浸过温热生理盐水的纱布(不可过湿)轻轻按压止血；如果出血不止，应立即用止血钳夹住出血部位，然后用棉线结扎止血。
5)分离主动脉神经
家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起，形成血管神经束，位于气管两侧，其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。术者用拇指和示指轻轻捏住分离的肌肉和皮肤，使示指向上顶而拇指向外翻，即可将血管神经束翻于示指之上。用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜，仔细辨认3种神经与颈总动脉(图4—19)：颈总动脉呈红色，有波动，壁有较强的弹性；迷走神经最粗，有较好的韧性，色洁白，一般位于外侧；交感神经较细，略呈灰色，一般位于内侧；主动脉神经最细，一般位于两神经之间。由于主动脉神经纤细，离开神经、动脉束的包膜后则难以分辨，所以应在原自然位置首先找到，并用玻璃分针沿纵向轻轻划动，分离出2 cm左右(此神经的韧性很差，易于拉断，分离时需十分小心)。用玻璃分针轻轻挑起分离后的神经，再用弯头眼科镊由神经下方穿过，将一浸过生理盐水的彩色丝线放于镊子内，轻轻收回夹住丝线的眼科镊，穿好线并打一活结备用。如果不能辨认出3条神经，则可先在颈总动脉下方穿过一条粗棉线(方法同上，但只分离很小一段动脉，需保留其前后的结缔组织束膜)。当轻轻提起动脉时即可看清3条神经，同法分离主动脉神经。分离主动脉神经、迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2～3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管测压，另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，需以对血压的影响为准。
