3.pEGFP(-)-C1载体的鉴定
我们用LF2000(4 µg/each 24-well)将纯化后的pEGFP(-)-C1(2 µg/each 24-well)转染CHO细胞。转染48小时后,荧光显微镜下没有观察到绿色荧光细胞(见彩版:彩图1),表明了EGFP基因中的W58无义突变(W58→*58,TG G→TA G)能够有效地终止EGFP的表达。
4.DNA短片段的制备
分别以pEGFP-C1和pEGFP(-)-C1为模板,使用引物1U和2D(5’-AGGGTGGTCACGAGGGTGGGCC-3’),进行高保真(Pfu DNA聚合酶)PCR反应,扩增双链DNA片段FG1及其对照片段FA1。FG1和FA1均为393 bp,处于EGFP基因的编码序列中。除第58位氨基酸残基密码子的中心碱基(FG1:TG G,FA1:TA G)外,FG1和FA1的其余序列均相同。
为了避免转染时模板的干扰,用0.8%琼脂糖凝胶电泳分离并切胶纯化FG1和FA1(见图3),再分别以纯化后的FG1和FA1为模板,使用引物1U和2D,进行高保真PCR反应,大量制备FG1和FA1,并用Wizard® PCR Preps DNA Purification System(Promega)纯化,最终溶于无菌超纯水中。
同理,分别以pEGFP-C1和pEGFP(-)-C1为模板,使用引物1U和1D(5’-AGTTCACCTTGATGCCGTTC-3’),进行高保真PCR反应,以同样的方式可制备双链DNA片段FG2及其对照片段FA2,纯化(见图3)后最终亦溶于无菌超纯水中。FG2和FA2均为695 bp,处于EGFP基因的编码序列中,除第58位氨基酸残基密码子的中心碱基(FG1:TG G,FA1:TA G)外,FG2和FA2的其余序列均相同。
图3、分离PCR反应所得DNA短片段的电泳图
5.DNA短片段的鉴定
我们利用LF2000(4 µg/each 24-well)分别将纯化后的FG1、FA1、FG2、和FA2(2 µg/each 24-well)转染CHO细胞。转染48小时后,荧光显微镜观察,结果表明:单独转染DNA片段FG1、FA1、FG2和FA2的CHO细胞均无绿色荧光。
6. 靶向修复CHO细胞中游离的缺陷型EGPF基因
6.1共转染含有缺陷型EGPF基因的质粒及DNA短片段
我们按照表1,设计4个转染组合,各自使用24-well细胞培养板进行转染。转染后24小时,将每个孔中的细胞对应传至单个35-mm细胞培养皿中,相当于1:5传代。
表1、不同的小片段DNA与pEGFP(-)-C1组合共转染CHO细胞加样表
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组合 |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
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共转染的小片段DNA (3µg/each 24-well) |
FG1 |
FA1 |
FG2 |
FA2 |
空白对照 |
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共转染的质粒DNA (0.6 µg/each 24-well) |
pEGFP(-)-C1 | ||||
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阳离子脂质体 |
Lipofectamine™2000(LF2000) | ||||


