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细胞固定、染色原理与方法
作者:未知 来源:生物秀 时间:2006-9-15

     4.染色原理
        (1)化学作用  碱性染料染细胞核;酸性染料染细胞质。
    (2)物理作用  染料通过毛细作用或渗透作用进入组织内部;组织吸附染料;染料进入细胞,由于吸收作用而留在细胞内部。
    三、常用染料
        1.染细胞核 
        (1)苏木精  苏木用乙醚连续提取即可得到苏木精。苏木精为黄棕色结晶,溶于酒精、甘油,可氧化生成苏木红。常用于永久切片的制作,亲水力弱,不可单独使用。
        (2)卡红(洋红、胭脂红)  取自雌胭脂虫,方法是将晒干后的成虫磨碎提炼出胭脂虫红,然后用明矾去杂质。卡红是一种复杂的化合物,起作用的是卡红酸。卡红在中性溶液里溶解度很小,所以要用酸性或碱性溶液溶解。
        醋酸洋红: 45%醋酸100ml与1-2g卡红混合,煮沸,充分溶解,凉后过滤。1-2个月后加媒染剂铁即可使用。主要染细胞核,若时间太长,细胞质也被染红。
        (3)碱性品红  染细胞核的特异染料。
        2.染细胞质   伊红Y、刚果红、苦味酸、酸性品红(品红+磺基)
    四、洋葱根尖有丝分裂的观察
        流程:固定好的根尖→水洗2-3次→1N HCl7-8min→水洗2-3次→取材(1/2分生区)→切碎→染色6-7min→加盖玻片→轻敲→压片→观察。
        1.材料准备:将洋葱放在加满水的广口瓶上,使其根茎部接触水面,然后转移到25-28℃的条件下培养。待根尖长到2cm左右使,在上午9-10点剪取根尖备用。
        2.预处理:为了有利于对有丝分裂过程中染色体的观察和计数,在固定前应对根尖进行预处理,这样可以改变细胞质的粘度,破坏和抑制纺锤体的形成,使染色体适度缩短和分散。预处理的方法有低温预处理和药物预处理。
        (1)低温预处理    将材料浸在蒸馏水中,放在1-4℃冰箱内离体处理24h。此法效果很好,对染色体无破坏作用,染色体缩短均匀,简便易行,各种作物都适用。
        (2)药物预处理
         ①0.05-0.2%秋水仙素溶液与室温下处理2-4h,对抑制纺锤体活动效果明显,易获得较多的中期分裂相,且染色体收缩较直,有利于染色体结构的研究。
         ②饱和对二氯苯溶液室温下处理3-5h,对阻止纺锤体活动和缩短染色体效果也较好,但对染色体小而多的植物来说个利于染色体的计数。
         ③0.002-0.00mol/L8-羟基喹啉18℃条件下处理5-6h,可以引起细胞粘度的改变,导致纺锤体活动受阻,使中期染色体在赤道面上保持相应的排列位置。缢痕区也较为清晰。一般认为对中等或长染色体的植物较合适。
         ④70ppm放线菌酮和250ppm8-羟基喹啉的混合液于25℃条件下,根尖不离体处理5h,可获得大量的分裂相,是最值得首选的预处理方法。
        3.固定::预处理后的根尖用蒸馏水冲洗2-3次,然后移入Carnoy’s固定液中,室温下固定2-24h后,用70%酒精冲洗2次转入70%酒精中于4℃冰箱中保存,最好不要超过2个月。如经过较长时间保存的材料,在使用前可以用固定液在处理一次。
        4.解离:解离有酸解和酶解两种方法,可以使分生区组织细胞间的果胶质分解,细胞壁软化或部分分解,使细胞和染色体容易压平。酸解一般用1N HCl在60℃水浴中处理7-8min即可。
        5.压片和染色:取处理好的根尖置于载玻片上,用吸水纸吸去多余的液体,用刀片将根尖的分生组织切下并切碎,加1-2滴改良苯酚品红染液,6-7min后加盖玻片。用铅笔的橡皮头或小镊子的柄端轻敲盖玻片,使材料均匀分散,然后压片。压片时用力要适当,不要移动盖玻片。
        6.镜检:低倍镜下找到分生区细胞,其特点为等直径细胞。细胞质浓厚,细胞核较大,占细胞体积的3/4。可以观察到有丝分裂过程中不同分裂时期的染色体。选取不同分裂时期的典型细胞,换高倍镜观察,注意细胞核染色体及纺锤体的变化动态。
        注意事项:
        (1)取材:取分生区,尽量要小;(2)解离要软,水洗要彻底,否则不易着色;(3)压片前先敲,可使细胞分散开;(4)防止出气泡。

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