核酸的分离与提取是分子生物学研究中很主要的基本技术，样品质量将直接关系到实验的成败。但是，不同的研究目的对DNA的纯度和量的要求不尽相同。目前，国际上已有许多DNA的提取方法，有较为通用的（Bendich等1980，Dellaporta等1983，Metter 1987，Murray和Thompson 1980，Rogers和Bendich 1988，Taylor和Powell 1982），有专门针对含较高多糖、多酚等次生代谢物植物的（Baker等 1990，Webb和knapp 1990，Couch和Fritz 1990，Guillemaut和Mare chal-Drouard 1992），有针对具体物种的，如棉花（Callahan和Mchta 1991）、甘薯（Baradarjan和Prakash 1991）、莲属植物（Kanazawa和Tsutsumi 1992）等。 
 
（2）所得DNA应当完整，电泳检查时可给出精确性高、重复性好的迁移带型。
（3）所得的DNA应有足够的量。例如，要研究多个遗传标记在某一植物居群中的分离情况，也许就要求从单株植物中提取的DNA可作100次分析；而在从大量植株中筛选一个单一遗传标记时，只需在一个Eppendorf管中微量提取得到的DNA就绰绰有余了。
如果是对植物进行大规模筛选，还应当满足下面这项要求：操作程序应当快速、简便、价格低廉，并尽可能避免使用有毒试剂。
有关植物DNA提取步骤的原理，本节将从众多的DNA提取方法中，结合本实验室的体会，选择CTAB法作一简介。CTAB（cetyltriethy lammonium bromide）是一种去污剂，这种方法的原理是：一定浓度的CTAB与核酸结合并通过离心形成CTAB－核酸复合物沉淀，而多糖等留在上相中。要使CTAB－核酸复合物的分开则先溶于高盐溶液中，再用乙醇沉淀核酸，CTAB溶于乙醇中。所得核酸DNA大小为20～50kb。很少有RNA干扰，必要时也可用RNase去除残留RNA。无论是新鲜材料或经脱水处理的材料，本方法均适用。
1.1 试验条件
【药品试剂】
抽提缓冲液（2×）：
CTAB（W/V）                    2%
Tris-HCl（pH8.0）                     100 mmol/L
EDTA                                 20 mmol/L
NaCl                                   1.4 mol/L
巯基乙醇                                   2%
10%CTAB溶液：
NaCl                                   0.7 mol/L
CTAB                                 10%
沉淀缓冲液：
CTAB                                 1%
Tris-HCl（pH8.0）                     50 mmol/L
EDTA                                 10 mmol/L
巯基乙醇                                   1%
CsCl梯度溶液（每梯度）：
CsCl                                          25 g
TE缓冲液（pH8.0）           25 ml
溴化乙锭（EB）                 5 mg/ml
TE缓冲液：
Tris-HCl（pH8.0）                     10 mmol/L
EDTA                                 1 mmol/L
异丙醇溶液：向装有一定量异丙醇的瓶中加入TE缓冲液直至两相出现，然后边搅拌边加入固体CsCl，至下层TE相中出现白色沉淀，两相混匀待用
液氮
氯仿/异戊醇（24/1）
异丙醇
2%巯基乙醇

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