从细胞中分离RNA的纯度于完整性对于许多分子生物学实验至关重要。如Northern印迹与杂交分析、寡聚（dT）纤维素选择分离mRNA，cDNA合成及体外翻译等实验的成败，在很大程度上决定于RNA的质量。
    RNA分离的最关键因素是尽量减少RNA酶的污染。
快速一步法提取总RNA
组织及有核细胞在匀浆过程中被变性液破膜、溶解，变性剂抑制RNA酶的活性，并使蛋白质变性及与核酸分离。经酸酚/氯仿将RNA抽提至水相，与DNA和蛋白质分离，再经异丙醇沉淀回收总RNA。
【试剂】
1×CSB缓冲液： 柠檬酸三钠            25mmol/L  pH7.0
                十二烷基肌苷酸钠       0.5%
                b-巯基乙醇             0.1mol/L
    配制100ml 5×CS缓冲液：柠檬酸三钠3.6762，十二烷基肌苷酸钠2.5g溶于100ml 0.05％DEPC水中，过滤，15lb/in2， 20min，去DEPC，4°C保存。
    用前100ml工作液加 b-巯基乙醇700ml。
4mol/L异硫氰酸胍变性缓冲液：
47.26g异硫氰酸胍加至100ml CSB缓冲液中。
    配制：23.63g异硫氰酸胍加热65°C溶于20ml无RNase水中，加10 ml 5×CS，加350ml b-巯基乙醇，用无RNase的水定量至50ml。（约加25ml水）
2mol/L 乙酸钠NaAc（pH4.0）：
16.4g乙酸钠加至0.05％DEPC水40ml，用冰乙酸调pH至4.0，定容至100ml，分装，高压20min去除DEPC。
3mol/L 乙酸钠NaAc (pH5.2):
     24.6g乙酸钠加至0.05％DEPC水80ml，用冰乙酸调pH至5.2，定容至100ml，分装，高压20分钟去除DEPC。
水饱和酚（酸酚，pH4.0）：
    取重蒸酚200ml，于65°C水浴溶解，加100ml无RNase水混匀，静置，取上层水相（大部分），加0.2g 8-巯基喹啉，混匀，保存于棕色广口瓶，4°C待用。
 
【操作方法】
1．  组织匀浆：新鲜的或液氮冻存的组织，称重后，按100mg组织/ml变性液，匀浆。置冰上30min。
培养细胞：贴壁细胞用PBS洗2次后，直接加2ml变性缓冲液/瓶；悬浮细胞用PBS洗沉淀2次，按107细胞/ml变性缓冲液，置冰上30min。
2．  取0.5ml粘稠液体加入1.5ml Eppendorf管（10ml塑料离心管）中，加50ml （1/10体积）2 mol/L NaAc（pH4.0），混匀。
3．  加0.5ml(等体积)酚和100ml (1/10体积的)氯仿：异戊醇（49:1），振荡混匀，冰浴10min。
4．  4°C，12000g，20min。
5．  吸上层水相入新管，加等体积异丙醇，-20°C，至少1hr。
6．  4°C，12000g，20min。
7．  弃上清，沉淀用1ml预冷的70%乙醇漂洗，并移入Eppendorf管。
8．  4°C，12000g，10min。
9．  弃上清，室温干燥蒸发残存乙醇，数分钟。
10．加100ml 水溶解RNA，测含量。
11．加1／10体积3mol乙酸钠(pH5.2)和2.5倍体积预冷的无水乙醇置-30℃30min。
12．离心，12000g，15min．
13．弃上清，加预冷的70％乙醇1ml，12000g，离心5min。弃上清，室温放置数分钟。
溶解RNA：每20mg RNA加4.5ml水溶解RNA，4℃存放待转膜（不宜久放）。

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