实验目的： 了解植物DNA抽提的主要方法，掌握CTAB法快速抽提水稻DNA。
实验材料及试剂：水稻叶片，1.5×CTAB，氯仿/异戊醇(24:1)，95%乙醇或无水乙醇等
实验原理：植物DNA的抽提常采用两种方法：
（1）SDS法： 离子去污剂，过程长，纯度高；
（2）CTAB法：该方法简便、快速，DNA产量高(纯度稍次，适用于一般分子生物学操作)。 CTAB是一种非离子去污剂，植物材料在CTAB的处理下，结合65°C水浴使细胞裂解、蛋白质变性、DNA被释放出来。CTAB与核酸形成复合物，此复合物在高盐（>0.7mM）浓度下可溶，并稳定存在，但在低盐浓度（0.1-0.5mM NaCl）下CTAB-核酸复合物就因溶解度降低而沉淀，而大部分的蛋白质及多糖等仍溶解于溶液中。经离心弃上清后，CTAB-核酸复合物再用70－75%酒精浸泡可洗脱掉CTAB。再经过氯仿/异戊醇(24:1) 抽提去除蛋白质、多糖、色素等来纯化DNA，最后经异丙醇或乙醇等DNA沉淀剂将DNA沉淀分离出来。
实验步骤：
1.采集适量幼嫩叶片，用液N2研成粉末，0.4 g装入1.5ml离心管中（-20℃预冷）。
2.预热1.5×CTAB到95℃，加1ml到装有叶片粉末的离心管中，混匀（防止冻融）。
3.立即置于65℃水浴30min，每5分钟，上下颠倒1次。
4.12000g离心5分钟。
5.吸取上清液约600µl，加入等体积（600µl）氯仿/异戊醇(24:1)，上下颠倒数次，至下层液相呈深绿色为止。
6.12000g离心5分钟。
7.取450µl上清于一新1.5ml离心管，加入1ml 95%乙醇和45µl 10M NH4AC），混匀，室温放置10min。
8.12000 g离心10min，去上清，用75% EtOH浸洗沉淀，自然干燥约30 min。
9.加入50µl 1/10 TE或无菌水（含20µg/RNase），置于4℃过夜，待DNA溶解后，检测DNA浓度及质量。
注意事项：
1.尽量取材幼嫩叶片，如太老，酚类物质多，必须用10 mM的β-ME处理
2.研钵预冻，粉末至加CTAB前不要融化
3.24:1的氯仿/异戊醇抽提时动作应轻柔，转移用的枪头最好是剪宽了的
4.所用试剂必需灭菌，手套
