胶体核酸回收法
1. 仪器用具：
a. 桌上型离心机
b. 干浴器
2. 药品及试剂：
QIAqiuck gel extraction kit (Qiagen)或其它厂牌。
3. 方法步骤：
1）质体DNA经限制酶切割后，以含EtBr之1% agarose gel进行电泳，电泳后以长波长UV灯观察DNA片段所在位置，并以干净刀片将之切下，尽可能切越小越好。
2）取一微量离心管，秤重后再将切下的胶体置于管内再秤重，以估计胶体重，每管胶体不超过400 mg，加入3倍体积之QG buffer (即每100 mg胶体加入300 ml QG buffer 。
3）置入50 干浴器(内放水)水浴10分钟，期间可每隔2~3分钟以手指轻弹管壁以加速胶体完全溶解。
4）加入胶体一倍体积之异丙醇混合均匀，此时溶液为黄色(为原本QG buffer的颜色)。
5）将QIAquick spin column置于2 ml离心管中，加入上一步的gel solution，12,000 rpm 离心一分钟。（此spin column之最大容量为800 ml，若样品体积超过800 ml，则需分次加入）。
6）离心后，倒掉离心管流出液，将spin column置回原离心管中，加入750 ml PE buffer，静置5分钟。
7）13,000 rpm离心1分钟，到掉流出液，将spin column置于原离心管中，重复13,000 rpm离心1分钟。
8）将spin column置于另一个干净的1.5 ml离心管中，加入10~15ml EB buffer或水到silica membrane上，静置1分钟。
9）13,000 rpm离心1分钟，丢弃spin column，此溶液即为浓缩DNA供下一个定量或接合反应（ligation）。
　
DNA之定量及纯度测定
1. 仪器用具：
a.   UV/VIS spectrophotometer (紫外线/可见光分光光度计)
b.  UV灯箱
c.  拍立得（polaroid）相机或数字影像分析系统
2. 材料：
小量制备DNA质体、DNA片段、PCR产物或oligonucleotide
3. Spectrophotometer定量法：
测定260nm吸光值，OD=1.0代表值如下：
a.  ds DNA (double stranded DNA) = 50 mg/ml
b.  ss DNA (single stranded DNA) = 40 mg/ml
c. oligonucleotide = 33 mg/ml
4. Ethidium bromide定量法：
利用一系列不同浓度的DNA标准溶液（0、2.5、5、10、20、30、40、50 ng/ml），或已知浓度的DNA marker，和未知浓度DNA样品一起进行琼胶（洋菜胶）电泳，以EtBr染色后，于UV灯箱上照相，比较标准浓度及未知浓度的亮度，来求取DNA 的含量。
5. 测定DNA纯度：
测定样品在260 nm及280 nm吸光值之比较，由数值大小判定DNA的纯度。OD₂₆₀/OD₂₈₀＝1.8表示DNA的纯度高，若数值<<1.8，表示纯度低，故单由OD₂₆₀测得的DNA含量较不可信。

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