此外，兔还可采用股静脉、颈静脉、股动脉及颈总动脉采血，一般需进行动、静脉分离术，而后采血。
小白鼠和大白鼠的颈静脉或颈动脉采血法：将鼠麻醉后背位固定于手术台上，剪去一侧颈部外侧的被毛，做常规颈静脉和颈动脉分离术。用注射器针头沿向心方向平行刺入血管，抽取所需血量。此法采血量：体重20g小白鼠可采血0.6ml左右；体重300g大白鼠可采血8ml左右。同法也可选用股动脉或股静脉采血。
尾静脉采血：将鼠放入固定筒内，露出鼠尾用手揉擦或温水（45—50℃）加温鼠尾，也可用二甲苯等涂擦鼠尾，使尾静脉充血。用剪刀剪断尾尖（小白鼠约1—2mm,大白鼠约5—10mm）后，即可流出血液。如血流不畅，可用手轻轻从尾根部向尾尖部挤压数次，可采到数滴血液。如实验需要间隔一段时间而多次采血时，每次采血可将鼠尾剪去很小一段，采血后，用棉球压迫止血，并立即用0.6ml液体火棉胶涂于尾部伤口处，使之结一层火棉胶膜，以保护伤口。此外，也可采用尾静脉交替切割法进行间隔、多次性采血。方法是用锋利手术刀片在尾部切一小口，切破一段尾静脉，血液即由伤口流出。此法每次可采0.3—0.5ml血液。可供一般血常规实验。尾部的3条静脉可交替切割，并由尾尖部向尾根部逐次切割，以保证连续多次使用。切割后用棉球压迫止血，约3天后即可结痂痊愈。此法在大白鼠采血是较为常用，效果较好。
（2）心脏采血：将兔背位固定，剪去左侧胸部相当于心脏部位的被毛，用碘酒和酒精消毒皮肤，选择心脏跳动最明显处作穿刺。一般有胸骨左缘外3mm处刺入第3肋间隙；穿刺时，最好用左手触诊心脏，以作配合。当针头接近心脏时就会感到心脏的跳动，这时需将针头再向里穿刺，便可进入心室。由于心脏的搏动，血液会进入注射器。如认为针头已进入心脏，但抽不出血液，可把针头稍微退出或前进一些。心脏采血经6—7天后，可以重复进行。采血量：在兔一次可去血液20—25ml.
7、动物处死方法：
（1）脊柱脱臼法 用左手拇指和食指捏住小白鼠头的后部，并用力下压，右手抓住鼠尾，用力向后上方拉，即可使颈椎脱臼，瞬间死亡（图）。
（2）空气栓塞法 像动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死亡。兔一般选用耳缘静脉。兔静脉内注入20—40ml空气即可致死。
（3）放血致死法 轻度麻醉动物后，固定于手术台上，行股部手术。暴露股三角区，分离股动脉（向心端用动脉夹夹住），并插入一根塑料管。打开动脉夹，使血液流入容器内，一般动物3—5min内即可致死。除股动脉外，常用颈总动脉放血。此法处死动物较为安静，对内脏器官无损伤，使采集病理切片标本，同时采集血液的一种较好的方法。兔可以采用此法处死。
第五节 常用仪器
一、电极
1、普通电极：多用银丝或不锈钢丝制成，一般将一条或两条金属丝镶嵌在有机玻璃或硬塑框套内，刺激端裸露，作为细胞外刺激用。
2、保护电极：保护电极的绝缘框套在刺激端弯曲成钩状，金属丝包埋其中，金属丝仅保留沟内一面裸露，以便施加刺激时，保护其周围的组织免受刺激。
3、锌铜弓：在生理学实验中，锌铜弓是检验标本机能活性最常用而简易的刺激器。由铜片和锌片两种金属制成。最早由Calvani所创造，故称Calvani镊子。锌铜弓具有刺激作用，是因为金属与溶液之间产生电位差，即电极电位。
通常将金属浸入电解质溶液中，如Zn便溶解而成Zn离子。而在Zn的里面则形成负离子。Cu在溶液中则相反，金属与溶液之间便产生了电位差——电极电位。如果将Zn和Cu一端接触，则在接触部位电流由Cu向Zn方向流动；而在溶液中则相反，由Zn向Cu流动。当锌铜弓接触组织时（注意：表面必须湿润），电流便沿Zn→可兴奋组织→Cu方向流动，而产生流动作用。这样，锌铜弓好像一个电池，Zn如同其阳极，Cu好像阴极而发挥作用。神经或肌肉的电刺激阈值非常小，所以仅用锌铜弓接触，即可构成刺激，以便检验组织的机能活性。
二、传感器
传感器是指将一种能量形式转变成另一种能量形式的装置。作为探测系统的组成部分，可将非电性质的生理现象，如机械、声、光、磁以及温度等能量形式转变为电信号，然后把这种电信号经过前置放大器放大，显示或记录在显示器或记录仪上。
1、张力传感器：将应变片贴在有弹性的应变梁的上、下两侧，制成张力传感器。则可记录力或位移的变化。生理学实验中，张力传感器的应用最为广泛。
2、呼吸传感器：可以记录张力的变化，常用于记录整体动物（或人）的呼吸运动。
3、胃肠蠕动传感器：同样可以记录张力的变化，常用于记录整体动物（或人）的胃肠蠕动。
4、 压力传感器：压力传感器可用应变片制作。应变片有电阻丝应变片和半导体应变片两种。压力传感器主要由承受压力的压力室和应变片组成。压力室可用金属波纹管、波纹片或橡皮薄膜制作，其上有开口通过接管与被测压力的部位连接。压力室外通过接管与外界相通，可用来测定压差。
三、其它常用物品
5 注射器 6 丝线 7 滴管 8 骨钻
9 动脉夹
