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RT-PCR实验方法大全
作者:未知 来源:本站原创 时间:2005-11-30


    三、注意事项

    1.本实验大部分为RNA操作,注意RNA酶的污染。

    2.RNase消化液消化未杂交的单链RNA和探针RNA,当探针与样品之间有碱基错配时,错配位点也将被消化,因此会产生片段较小的杂交片段。因此进行PCR时,采取尽量减少错配的措施。

    3、 同位素对RNA合成有一定影响,有时会产生非全长的探针。因此,标记时间不宜过长。

    4、 RNase消化液有时会产生过度消化而无检测信号,可以将消化液稀释10-100倍后使用。

     
    可能问题出在标本的保存:一般四小时之内就应处理,分离出细胞
    说的是套式PCR,可以在你的第一次PCR两个引物内,再设计一对引物进行第二次PCR就行了
    如果你的第一次PCR刚好包括目的片段,那只好设计个更长的了
    第二次的引物设计要求可以低一点
    以50μl体系为例
    引物各1μl
    第一次PCR产物5μl

    二次PCR和巢式PCR,即设计两对引物进行扩增,不是一个概念,它是拿第一次的PCR产物,稀释100-1000倍做模板,加入底物,从新进行扩增反应,以期增加产物的量

    我做RT-PCR时,提总RNA时,都是用灭菌DEPC水,按1:100稀释后测OD260和OD280,后根据公式:RNA浓度=OD260*稀释度/25(ug/ul),后用1mg total RNA分离mRNA.做逆转录及PCR,效果很好.

    luoyu10 wrote:
    各位大哥:
    我有一个问题请教,RT-PCR要求模板RNA的260nm/280nm的比值最低为多少,如果太低是不是会影响结果?

    最低到1.8,最好2.0,我感觉稍微低一点影响不算太大。

    问:我是RT-PCR的新手,想请教引物如何设计?

    好的引物所具有的令人满意的特点:
    *  典型的引物18到24个核苷长。引物需要足够长,保证序列独特性,并降低序列存在于非目的序列位点的可能性。但是长度大于24核苷的引物并不意味着更高的特异性。较长的序列可能会与错误配对序列杂交,降低了特异性,而且比短序列杂交慢,从而降低了产量。
    *  选择GC含量为40%到60%或GC含量反映模板GC含量的引物。
    *  设计5'端和中间区为G或C的引物。这会增加引物的稳定性和引物同目的序列杂交的稳定性。
    *  避免引物对3'末端存在互补序列,这会形成引物二聚体,抑制扩增。
    *  避免3'末端富含GC。设计引物时保证在最后5个核苷中含有3个A或T。
    *  避免3'末端的错误配对。3'端核苷需要同模板退火以供聚合酶催化延伸。
    *  避免存在可能会产生内部二级结构的序列,这会破坏引物退火稳定性。
    目的序列上并不存在的附加序列,如限制位点和启动子序列,可以加入到引物5'端而不影响特异性。当计算引物Tm值时并不包括这些序列,但是应该对其进行互补性和内部二级结构的检测。

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