电镜样品取材方法
1 动物及人体组织的取材
动物组织的取材，应在麻醉（1%戊巴比妥钠按5ml/kg体重腹腔注射）或断头急性处死，解剖出所需器官，用解剖剪刀剪取一小块组织，放在干净的纸板上，滴一滴冷却的固定液，用新的、无油污锋利的（双面）刀片将材料切成大约1㎜宽，2～3㎜长的小块，从中挑选损伤小的小条，再将其切成１㎜3的小块，最后用牙签将这些小块逐一放入盛有冷的新鲜固定液的有盖青霉素小瓶里，放入冰箱冷藏室低温固定（0～4℃）。
2 体外培养细胞的取材
生长在培养瓶中的体外培养细胞取材时，先倒出培养液，接着到入适量的戊二醛固定液，在冰浴上放置3～5min，然后用刮刀轻轻刮下瓶壁上的细胞，将含有细胞的固定液转移到离心管中，普通离心机低速离心（2000转/分钟）15min，使细胞聚成团块，弃去上清夜，换上新鲜固定液继续固定。
3 植物组织的取材
植物组织的取材比较容易，它的细胞离体后变化不象动物细胞那样迅速，但植物细胞的细胞壁阻碍着固定液的迅速渗透。因此，植物材料的取材宜切成薄片状，经适当固定后再切成小方块。
电镜样品取材的基本要求
⑴ 快 取材的动作要迅速，最好在材料离体后１min内就进入固定液；解剖器械要锋利，避免牵拉和挤压，尽量减少取材中的机械损伤。
⑵ 准 取材要准确。① 器官要准确 ② 部位要准确：如脑垂体的前叶和后叶要分清，其结构和功能各不相同。
⑶ 冷 取材过程应尽量在低温下进行（0～4℃），以降低酶的活性，减少细胞内结构的损失。
⑷ 小 所取材料体积要小，一般不超过1㎜3。因为固定剂的渗透力较弱，若组织块太大，块的内部将得不到良好的固定。
电镜制样中常用固定剂的配制方法
⑴ 缓冲液的配制
Ａ、磷酸缓冲液（0.2M）的配制方法如下：
甲液：Na2HPO4.12H2O 71.64g
加蒸馏水溶解成 1000ml
乙液：NaH2PO4.2H2O 31.21g
加蒸馏水溶解成 1000ml
按下表混合甲、乙两液即得所需PH的磷酸缓冲液
表1：0.2M的磷酸缓冲液的配制（50ml）
PH 6.4 6.6 6.8 7.0 7.2 7.4
甲液（ml） 13.3 18.8 24.5 30.5 36.0 40.5
乙液（ml） 36.7 31.2 25.5 19.5 14.0 9.5
磷酸盐缓冲液对细胞无毒性作用，常用于配制戊二醛固定液，并适于作灌注固定。本缓冲液的缺点是固定时容易产生沉淀，并容易生长细菌，不能长期储存。
B、 二甲胂酸盐缓冲液（0.2M）
甲液：二甲胂酸钠 4.28g
加蒸馏水至 100ml
乙液：0.2N盐酸
按表2混合甲、乙两液后，将总体积稀释成200ml即可获得不同PH的缓冲液
表2：二甲胂酸钠缓冲液的配制
PH 6.4 6.6 6.8 7.0 7.2 7.4
甲液（ml） 50 50 50 50 50 50
乙液（ml） 18.3 13.3 9.3 6.3 4.2 2.7
本缓冲液比较稳定，不易生长细菌，可长期保存，与低浓度的钙质（1-3mM）不发生沉淀反应。缺点是胂有毒性、有臭味，配制时应在通风橱中进行。
