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mRNA的分离与纯化
作者:未知 来源:WEB 时间:2005-8-4

    3. 样品制备:取总RNA4.5μl(约20-30μg) ,加入5×甲醛凝胶电泳缓冲液 4.0μl、37%甲醛3.6μl、甲酰胺10μl,65℃温育15min、冰浴5min。加入EB(1μg/μl)1μl、上样缓冲液2μl。
    4. 电泳:上样,50V电泳(电泳时间约2hr左右)。电泳结束后将胶块置紫外灯下,观察RNA的完整性,记录18S、28S条带的位置(离加样孔的距离)。
    5.   将RNA从变性胶转移到硝酸纤维素膜或尼龙膜:
    (1) 按胶块大小剪取膜一张,用DEPC水中浸湿后,置于20×SSC中浸泡1hr。剪去膜一角。
    (2)将胶块切去一角,并在20×SSC浸泡15min×2次。
    (3)用长和宽均大于凝胶的一块有机玻璃板作为平台,将其放入大的干烤皿上,上面放一张Whatman 3MM滤纸,倒入20×SSC使液面略低于平台表面,当平台上方的3MM滤纸湿透后,用玻棒赶出所有气泡。
    (4)将凝胶翻转后置于平台上湿润的3MM滤纸中央,3MM滤纸和凝胶之间不能滞留气泡。
    (5)用Parafilm膜围绕凝胶四周,以此作为屏障,阻止液体自液池直接流至胶上方的纸巾。
    (6) 在凝胶上方放置预先已浸湿的尼龙膜,排除膜与凝胶之间的气泡。
    (7) 将二张已湿润的、与凝胶大小相同的3MM滤纸置于膜的上方,排除滤纸与滤膜之间的气泡。
    (8) 将一叠(5-8cm厚)略小于3MM滤纸的纸巾置于3MM滤纸的上方,并在纸巾上方放一块玻璃,然后用一个重约500克的重物压在玻璃板上。其目的是建立液体自液池经凝胶向膜上行流路,以洗脱凝胶中的RNA并使其聚集在膜上。
    6.使上述RNA转移持续进行15hr左右。在转膜过程中,当纸巾浸湿后,应更换新的纸巾。
    7.转移结束后,揭去凝胶上方的纸巾和3MM滤纸。将膜在6×SSC中浸泡5 min,以去除膜上残留的凝胶。
    8.将凝胶置紫外灯下,观察胶块上有无残留的RNA。
    9.膜置80℃,真空干烤1-2hr。烤干后的膜用塑料袋密封,4℃保存备用。
    10. 探针标记(Prime-a-Gene Labeling System, Promega公司):
    (1) 取模板DNA 25ng于0.5ml离心管中,95-100℃变性5min,冰浴5min。
    (2) dNTPmix的制备: 取dGTP 1μl、dATP 1μl、dTTP 1μl混匀。
    (3)将下列反应成份混合,加入上述微量离心管中:
    dNTPmix   2.0μl
    BSA(10mg/ml )   2.0μl
    5×buffer   10.0μl
    Klenow 酶(5u/μl) 1.0μl
    α-32P-dCTP   5.0μl
    加入适量dd H2O使反应总体积达50μl,轻轻混匀。室温下反应1hr。
    11.预杂交:将膜的反面紧贴杂交瓶,加入预杂交液5ml,42℃预杂交3hr。
    12.杂交:将变性的探针(95-100℃变性5min,冰浴5min)加入到预杂交液中,42℃杂交16hr。
    13.洗膜:
    (1)倾去杂交液。
    (2)2×SSC/0.1%SDS室温洗15min。
    (3)0.2×SSC/0.1%SDS,55℃洗15min×2次。
    14.压片:将膜用dd H2O漂洗片刻,用滤纸吸去膜上水份。用薄型塑料纸将膜包好,置于暗盒中,在暗室中压上X光片。暗盒置-70℃放射自显影3~7天左右。
    三、注意事项
    1.操作时必须仔细、小心,严格按同位素操作规程进行,以防止同位素污染。
    2.必要时,可采用Sephades G-50柱层析法纯化标记的探针(见本节附录),以去除标记反应中未结合的(游离的)核苷酸。
    3.膜的重复使用:结合了待测RNA的膜与探针杂交后,可经碱或热变性方法将探针洗脱,膜可反复使用与其它探针杂交。方法如下:杂交的膜(注意:杂交过的膜在保存过程中不能干燥,否则探针将会与膜形成不可逆的结合)置 100℃ 0.5% SDS中煮沸3min,自然冷却至室温后,将膜放入双蒸水中漂洗2-3遍。取出膜,用滤纸吸去膜表面的水份。将膜直接进行另一种探针的杂交或用保鲜膜包好,室温下真空保存。


    RNA酶保护试验
    RNA酶保护试验((RNase Protection Assay,RPA)是通过液相杂交的方式,用反义RNA探针与样品杂交,以检测RNA表达的技术。与Northern杂交和RT-PCR比较,RPA有以下几个优点:
    1. 检测灵敏度比Northern杂交高。由于Northern杂交步骤中转膜和洗膜都将造成样品和探针的损失,使灵敏度下降,而RPA将所有杂交体系进行电泳,故损失小,提高了灵敏度。
    2. 由于PCR扩增过程中效率不均一和反应“平台”问题,基于PCR产物量进行分析所得数据的可靠性将下降,而RPA没有扩增过程,因此,分析的数据真实性较高。
    3. 由于与反义RNA探针杂交的样品RNA仅为该RNA分子的部分片段,因此,部分降解的RNA样品仍可进行分析。
    4. 步骤较少,耗时短。与Northern杂交相比,省去了转膜和洗膜的过程。
    5. RNA-RNA杂交体稳定性高,无探针自身复性问题,无须封闭。
    6. 一个杂交体系中可同时进行多个探针杂交,无竞争性问题。
    7. 检测分子长度可以任意设置,灵活性大。
    RPA的缺点是需要同位素标记探针。

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